Leistungsverzeichnis

Messgenauigkeit

Messgenauigkeit steht bei uns an oberster Stelle. Durch kontinuierliche Maßnahmen und regelmäßige Kontrollen streben wir danach, methodenbedingte Abweichungen der Messwerte vom wahren Wert sowie Schwankungen so weit wie möglich zu minimieren.

Die Aktualität des Leistungsverzeichnisses entspricht dem Februar 2025.

Leistungsverzeichnis Labor

Tickplex Basic - Borrelia IgG, IgM

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<0,89 negativ; 0,9-0,99 grenzwertig; >1,0 positiv
Gerät:
Reader
Indikation:

Tickplex Plus - Borrelia afzelii/burgdorferi/garinii, Babesia microti, Bartonella henselae, Ehrlichia chaffeensis, Rickettsia akari, Coxsackievirus Typ A16, Epstein-Barr-Virus, Human Prvovirus B19, Mycoplasma pneumoniae/fermentans

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
Tickplex Plus
Referenzbereich:
<0,89 negativ, 0,9-0,99 schwach, >1,0 positiv
Gerät:
Reader
Indikation:

Anaplasma IgG, IgM

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
IFT
Referenzbereich:
<1:64, <1:20
Gerät:
Fluoreszenzmikroskop

Babesia IgG, IgM

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
IFT
Referenzbereich:
<1:16, <1:20
Gerät:
Fluoreszenzmikroskop

Bartonella henselae IgG, IgM

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
IFT
Referenzbereich:
<1:64, <1:20
Gerät:
Fluoreszenzmikroskop

Bartonella quintana IgG, IgM

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
IFT
Referenzbereich:
<1:64, <1:20
Gerät:
Fluoreszenzmikroskop

Borrelia-IgG, IgM

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<16 negativ; 16-22 grenzwertig; >22 positiv
Gerät:
Reader
Indikation:

Borrelia-IgG, IgM

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
Line-Blot
Referenzbereich:
Negativ
Gerät:
Euroblotmaster, Eurolinescan
Indikation:

Borrelia-IgG, IgM

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
Microarray
Referenzbereich:
Negativ
Gerät:
Spotsight
Indikation:

Campylobacter jejuni-IgG/-IgA

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
Line-Blot
Referenzbereich:
negativ
Gerät:
Euroblotmaster, Eurolinescan

Chlamydia pneumoniae IgG, IgA

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
Negativ: <0,8; Grenzwertig: 0,8-1,1; Positiv: >1,1
Gerät:
Reader

Chlamydia trachomatis IgG, IgA

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
Negativ: <0,8; Grenzwertig: 0,8-1,1; Positiv: >1,1
Gerät:
Reader

Ehrlichia chaffeensis IgG, IgM

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
IFT
Referenzbereich:
<1:64, <1:20
Gerät:
Fluoreszenzmikroskop

Mycoplasma pneumoniae IgG, IgA

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<0,8 negativ; 0,8-1,1 grenzwertig;>1,1 positiv
Gerät:
Reader

Rickettsia typhi, rickettsi IgG, IgM

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
IFT
Referenzbereich:
<1:64
Gerät:
Fluoreszenzmikroskop

Yersinia enterocolitica IgG, IgA

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<0,8 negativ, 0,8-1,1 grenzwertig, >1,1 positiv
Gerät:
Reader

Aspergilus Peptid Mix 1,2 iSpot*

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader

Babesia microti iSpot*

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader

Bartonella henselae iSpot*

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader

Borrelia iSpot*

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Indikation:

Borrelia miyamotoi iSpot*

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Indikation:

Candida albicans iSpot*

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader

Chlamydia pneumoniae iSpot*

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader

Chlamydia trachomatis iSpot*

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader

Ehrlichia, Anaplasma iSpot*

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader

Mycoplasma pneumoniae iSpot*

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader

Rickettsia iSpot*

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader

T-Lymphocytes mit Aspergillus Peptid Mix 1, 2

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader

T-Lymphocytes mit Babesia microti

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader

T-Lymphocytes mit Bartonella henselae

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader

T-Lymphocytes mit Borrelia miyamotoi*

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Indikation:

T-Lymphocytes mit Borrelia*

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Indikation:

T-Lymphocytes mit Candida albicans

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader

T-Lymphocytes mit Chlamydia pneumoniae

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader

T-Lymphocytes mit Chlamydia trachomatis

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader

T-Lymphocytes mit Ehrlichia, Anaplasma

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader

T-Lymphocytes mit Mycoplasma pneumoniae

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader

T-Lymphocytes mit Rickettsia

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader

T-Lymphocytes mit Yersinia

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader

Yersinia iSpot*

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader

igG-Foodscreen Basic (90 Nahrungsmittel)*

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
negativ
Gerät:
Reader
Indikation:

IgG-Foodscreen Basic Plus (180 Nahrungsmittel)*

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
negativ
Gerät:
Reader
Indikation:

IgG-Foodscreen Complete (270 Nahrungsmittel)*

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
negativ
Gerät:
Reader
Indikation:

IgG-Foodscreen Screening (44 Nahrungsmittel)*

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
negativ
Gerät:
Reader
Indikation:

Toxiplex Basic (Aflatoxin B1, Deoxynivalenol, Fumonisin (B1 & B2), Ochratoxin A, und Zearalenone)*

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
negativ
Gerät:
Reader
Indikation:

Immune Status

Verfahren:
Durchflusszytometrie
Untersuchungsmaterial:
Heparin, EDTA
Untersuchungstechnik:
Durchflusszytometrie
Referenzbereich:
Gerät:
DxFLEX
Indikation:

Coxsackie-Virus A7, B1 IgA

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
IFT
Referenzbereich:
<1:10
Gerät:
Fluoreszenzmikroskop

Coxsackie-Virus A7, B1 IgG

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
IFT
Referenzbereich:
<1:100
Gerät:
Fluoreszenzmikroskop

Cytomegalo-Virus IgG, IgM

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<0,8 negativ, 0,8-1,1 grenzwertig, >1,1 positiv
Gerät:
Reader
Indikation:

Echoviren IgA, IgM

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
< 10 U/ml negativ, 10 – 15 U/ml grenzwertig, > 15 U/ml positiv
Gerät:
Reader

Echoviren IgG

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
< 11 U/ml negativ, 11 – 15 U/ml grenzwertig, > 15 U/ml positiv
Gerät:
Reader

Epstein-Barr-Virus CA IgG, IgM, EBNA

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
Mikroarray
Referenzbereich:
<15
Gerät:
AID Reader
Indikation:

Herpes simplex Virus 1, 2 IgM, IgG, IgA

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<0,8 negativ, 0,8-1,1 grenzwertig, >1,1 pos
Gerät:
Reader
Indikation:

Parvovirus B19 IgG, IgM

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
Gerät:
Reader

Varizella Zoster Virus IgG

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<80IE/l negativ, 80-110 grenzwertig, >110IE/l positiv
Gerät:
Reader
Indikation:

Varizella Zoster Virus IgM, IgA

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<0,8 negativ, 0,8-1,1 grenzwetig, >1,1 positiv
Gerät:
Reader
Indikation:

HHV 6 iSpot*

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader

HHV 7 iSpot*

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 schwach positiv, >3 positiv
Gerät:
AID Reader

HSV 1/2 iSpot*

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
Gerät:
AID Reader
Indikation:

SARS CoV-2 iSpot*

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<5 negativ, 5-6 grenzwertig, >6 positiv
Gerät:
AID Reader
Indikation:

T-Lymphocytes mit CMV (2 Antigens: lytic + latent)

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Indikation:

T-Lymphocytes mit EBV (2 Antigens: lytic + latent)

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Indikation:

T-Lymphocytes mit HSV 1/2

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Indikation:

T-Lymphoztyten mit HHV6

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader

T-Lymphoztyten mit HHV7

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader

T-Lymphoztyten mit VZV

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Indikation:

VZV iSpot

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Indikation:

Ascaris IgG

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
Gerät:
Reader

Echinococcus multilocularis, granulosus IgG

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<9 negativ, 9-11 grenzwertig, >11 positiv
Gerät:
Reader

Entamoeba histolytica IgG

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<9 negativ, 9-11 grenzwertig, >11 positiv
Gerät:
Reader

Leishmania infantum IgG

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<9 negativ, 9-11 grenzwertig, >11 positiv
Gerät:
Reader

Taenia solium IgG

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<9 negativ, 9-11 grenzwertig, >11 positiv
Gerät:
Reader

Toxocara canis IgG

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<9 negativ, 9-11 grenzwertig, >11 positiv
Gerät:
Reader

Toxoplasmosis IgM, IgG

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<0,8 negativ; 0,8-1,1 grenzwertig; >1,1 positiv
Gerät:
Reader

Trichinella spiralis IgG

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<9 negativ, 9-11 grenzwertig, >11 positiv
Gerät:
Reader

Darm Helminthen Multiplex-PCR

Verfahren:
PCR
Untersuchungsmaterial:
Stuhlprobe
Untersuchungstechnik:
Multiplex PCR
Referenzbereich:
Gerät:
Reader

Darm Protozoen Multiplex-PCR

Verfahren:
PCR
Untersuchungsmaterial:
Stuhlprobe
Untersuchungstechnik:
Multiplex PCR
Referenzbereich:
Gerät:
Reader

Darmpathogene Bakterien Multiplex-PCR

Verfahren:
PCR
Untersuchungsmaterial:
Stuhlprobe
Untersuchungstechnik:
Multiplex PCR
Referenzbereich:
Gerät:
Reader
Indikation:

STI-Erreger Essential Multiplex-PCR

Verfahren:
PCR
Untersuchungsmaterial:
Urinprobe
Untersuchungstechnik:
Multiplex-PCR
Referenzbereich:
Gerät:
Reader
Indikation:

STI-Erreger Genital ulcer Multiplex-PCR

Verfahren:
PCR
Untersuchungsmaterial:
Urinprobe
Untersuchungstechnik:
Multiplex-PCR
Referenzbereich:
Gerät:
Reader
Indikation:

Analyte (Messgrößen), welche mit einem * markiert sind, wurden nicht akkreditiert.

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Informationen zur Präanalytik

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Wichtige Hinweise zur Präanalytik und Probenhandhabung

Auf die komplexe Phase der Präanalytik können wir nur insofern Einfluss nehmen, als dass wir Ihnen die geeigneten Entnahme- und Versandmaterialien zur Verfügung stellen und Ihnen Informationen liefern. Ein korrektes Probenhandling in der präanalytischen Phase (z.B. Blutabnahmetechnik, Transport) beeinflusst maßgeblich die Zuverlässigkeit von Laboranalysen und trägt dadurch in hohem Maße zur Qualitätssicherung bei. Präanalytische Fehler sind eine häufige Ursache für klinisch unplausible Befunde und können zu Fehlinterpretationen und inadäquater Behandlung führen. Durch eine korrekte Probenentnahme, richtige Wahl der Entnahmegefäße und schnellstmöglichen Probentransport sind die meisten Störungen vermeidbar. Alle durchgeführten Analysen werden gemäß den ­Richtlinien der Bundesärztekammer (RiLiBÄK) durchgeführt.

Da sich die meisten Teilschritte der Kontrolle durch das Labor entziehen, soll hier auf die wichtigsten Aspekte kurz eingegangen werden.

Die vorliegenden Informationen sollen dazu dienen, präanalytische Fehler minimal zu halten und so die Voraussetzung für zuverlässige Befunde zu schaffen. Informationen zur Präanalytik finden sie auf der Homepage unter „Formulare und Checklisten“. Weitere Auskünfte können telefonisch oder per Mail über unser Kontaktformular eingeholt werden.

Vor der Probenahme sollten die benötigten Probengefäße (Verfallsdatum beachten!) bereitgelegt und mit den erforderlichen Daten beschriftet werden. Um Fehler bei der Probenzuordnung zu vermeiden und um Verwechslungen auszuschließen, ist eine korrekte und leserliche Beschriftung beziehungsweise Barcodierung der Probengefäße mit dem Untersuchungsmaterial erforderlich, nicht der Schutzhülle oder der Versandtüte!

Blutbild- und EliSpot-/iSpot-Röhrchen müssen wegen des erforderlichen Mischungsverhältnisses immer bis zur Markierung gefüllt werden, da die enthaltene Lösung in einem bestimmten Volumen vorgelegt ist.