Leistungsverzeichnis

Messgenauigkeit

Messgenauigkeit steht bei uns an oberster Stelle. Durch kontinuierliche Maßnahmen und regelmäßige Kontrollen streben wir danach, methodenbedingte Abweichungen der Messwerte vom wahren Wert sowie Schwankungen so weit wie möglich zu minimieren.

Die Aktualität des Leistungsverzeichnisses entspricht dem Februar 2025.

Leistungsverzeichnis Labor

Tickplex Basic - Borrelia IgG, IgM

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<0,89 negativ; 0,9-0,99 grenzwertig; >1,0 positiv
Gerät:
Reader
Indikation:
Ansatztage:

Tickplex Plus - Borrelia, Bartonella, Babesia, Ehrlichia, Coxsackie, EBV, Parvovirus, Mycoplasma, Rickettsia

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
Tickplex Plus
Referenzbereich:
<0,89 negativ, 0,9-0,99 schwach, >1,0 positiv
Gerät:
Reader
Indikation:
Ansatztage:

Anaplasma phagocyt. IgG, IgM

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
IFT
Referenzbereich:
<1:64, <1:20
Gerät:
Fluoreszenzmikroskop
Ansatztage:

Babesia IgG, IgM

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
IFT
Referenzbereich:
<1:16, <1:20
Gerät:
Fluoreszenzmikroskop
Ansatztage:

Bartonella henselae IgG, IgM

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
IFT
Referenzbereich:
<1:64, <1:20
Gerät:
Fluoreszenzmikroskop
Ansatztage:

Bartonella quintana IgG, IgM

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
IFT
Referenzbereich:
<1:64, <1:20
Gerät:
Fluoreszenzmikroskop
Ansatztage:

Borrelia-IgG, IgM

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<16 negativ; 16-22 grenzwertig; >22 positiv
Gerät:
Reader
Indikation:
Ansatztage:

Borrelia-IgG, IgM

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
Line-Blot
Referenzbereich:
Negativ
Gerät:
Euroblotmaster, Eurolinescan
Indikation:
Ansatztage:

Borrelia-IgG, IgM

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
Microarray
Referenzbereich:
Negativ
Gerät:
Spotsight
Indikation:
Ansatztage:

Campylobacter jejuni-IgG/-IgA

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
Line-Blot
Referenzbereich:
negativ
Gerät:
Euroblotmaster, Eurolinescan
Ansatztage:

Chlamydia pneumoniae IgG, IgA

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
Negativ: <0,8; Grenzwertig: 0,8-1,1; Positiv: >1,1
Gerät:
Reader
Ansatztage:

Chlamydia trachomatis IgG, IgA

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
Negativ: <0,8; Grenzwertig: 0,8-1,1; Positiv: >1,1
Gerät:
Reader
Ansatztage:

Ehrlichia chaffeensis IgG, IgM

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
IFT
Referenzbereich:
<1:64, <1:20
Gerät:
Fluoreszenzmikroskop
Ansatztage:

Mycoplasma pneumoniae IgG, IgA

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<0,8 negativ; 0,8-1,1 grenzwertig;>1,1 positiv
Gerät:
Reader
Ansatztage:

Rickettsia typhi, rickettsi IgG, IgM

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
IFT
Referenzbereich:
<1:64
Gerät:
Fluoreszenzmikroskop
Ansatztage:

Yersinia enterocolitica IgG, IgA

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<0,8 negativ, 0,8-1,1 grenzwertig, >1,1 positiv
Gerät:
Reader
Ansatztage:

Aspergillus Peptid Mix 1, 2

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Ansatztage:

Aspergilus Peptid Mix 1, 2

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Ansatztage:

Babesia microti

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Ansatztage:

Babesia microti

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Ansatztage:

Bartonella henselae

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Ansatztage:

Bartonella henselae

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Ansatztage:

Borrelia miyamotoi*

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Indikation:
Ansatztage:

Borrelia miyamotoi*

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Indikation:
Ansatztage:

Borrelia*

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Indikation:
Ansatztage:

Borrelia*

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Indikation:
Ansatztage:

Candida albicans

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Ansatztage:

Candida albicans

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Ansatztage:

Chlamydia pneumoniae

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Ansatztage:

Chlamydia pneumoniae

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Ansatztage:

Chlamydia trachomatis

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Ansatztage:

Chlamydia trachomatis

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Ansatztage:

Ehrlichia, Anaplasma

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Ansatztage:

Ehrlichia, Anaplasma

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Ansatztage:

Mycoplasma pneumoniae

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Ansatztage:

Mycoplasma pneumoniae

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Ansatztage:

Rickettsia

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Ansatztage:

Rickettsia

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Ansatztage:

Yersinia

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Ansatztage:

Yersinia

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Ansatztage:

igG-Foodscreen Basic (90 Nahrungsmittel)*

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
negativ
Gerät:
Reader
Indikation:
Ansatztage:

IgG-Foodscreen Basic Plus (180 Nahrungsmittel)*

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
negativ
Gerät:
Reader
Indikation:
Ansatztage:

IgG-Foodscreen Complete (270 Nahrungsmittel)*

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
negativ
Gerät:
Reader
Indikation:
Ansatztage:

IgG-Foodscreen Screening (44 Nahrungsmittel)*

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
negativ
Gerät:
Reader
Indikation:
Ansatztage:

Toxiplex Basic (Aflatoxin B1, Deoxynivalenol, Fumonisin (B1 & B2), Ochratoxin A, und Zearalenone)*

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
negativ
Gerät:
Reader
Indikation:
Ansatztage:

Immunprofil (CD19/CD3-/CD57+/CD56+Zellen)

Verfahren:
Durchflusszytometrie
Untersuchungsmaterial:
Heparin, EDTA
Untersuchungstechnik:
Durchflusszytometrie
Referenzbereich:
Gerät:
DxFLEX
Indikation:
Ansatztage:

CMV IgG, IgM

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<0,8 negativ, 0,8-1,1 grenzwertig, >1,1 positiv
Gerät:
Reader
Indikation:
Ansatztage:

Coxsackie-Virus A7, B1 IgA

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
IFT
Referenzbereich:
<1:10
Gerät:
Fluoreszenzmikroskop
Ansatztage:

Coxsackie-Virus A7, B1 IgG

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
IFT
Referenzbereich:
<1:100
Gerät:
Fluoreszenzmikroskop
Ansatztage:

EBV IgG, IgM, EBNA

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
Mikroarray
Referenzbereich:
<15
Gerät:
AID Reader
Indikation:
Ansatztage:

Echoviren Typ 7 IgA, IgM

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
< 10 U/ml negativ, 10 – 15 U/ml grenzwertig, > 15 U/ml positiv
Gerät:
Reader
Ansatztage:

Echoviren Typ 7 IgG

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
< 11 U/ml negativ, 11 – 15 U/ml grenzwertig, > 15 U/ml positiv
Gerät:
Reader
Ansatztage:

HSV 1/2 IgM, IgG, IgA

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<0,8 negativ, 0,8-1,1 grenzwertig, >1,1 pos
Gerät:
Reader
Indikation:
Ansatztage:

Parvovirus B19 IgG, IgM

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
Gerät:
Reader
Ansatztage:

VZV IgG

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<80IE/l negativ, 80-110 grenzwertig, >110IE/l positiv
Gerät:
Reader
Indikation:
Ansatztage:

VZV IgM, IgA

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<0,8 negativ, 0,8-1,1 grenzwetig, >1,1 positiv
Gerät:
Reader
Indikation:
Ansatztage:

CMV (2 Antigene: lytisch+latent)

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Indikation:
Ansatztage:

EBV (2 Antigene: lytisch+latent)

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Indikation:
Ansatztage:

HHV 6

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Ansatztage:

HHV 7

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 schwach positiv, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Ansatztage:

HHV6

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Ansatztage:

HHV7

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Ansatztage:

HSV 1/2

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Indikation:
Ansatztage:

HSV 1/2

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
Gerät:
AID Reader
Indikation:
Ansatztage:

SARS CoV-2 (SARS-Mix)

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<5 negativ, 5-6 grenzwertig, >6 positiv
Gerät:
AID Reader
Indikation:
Ansatztage:

VZV

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Indikation:
Ansatztage:

VZV

Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Indikation:
Ansatztage:

Ascaris suum+lumbricoides IgG

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
Gerät:
Reader
Ansatztage:

Echinococcus multilocularis+granulosus IgG

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<9 negativ, 9-11 grenzwertig, >11 positiv
Gerät:
Reader
Ansatztage:

Entamoeba histolytica IgG

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<9 negativ, 9-11 grenzwertig, >11 positiv
Gerät:
Reader
Ansatztage:

Leishmania infantum IgG

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<9 negativ, 9-11 grenzwertig, >11 positiv
Gerät:
Reader
Ansatztage:

Taenia solium IgG

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<9 negativ, 9-11 grenzwertig, >11 positiv
Gerät:
Reader
Ansatztage:

Toxocara canis IgG

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<9 negativ, 9-11 grenzwertig, >11 positiv
Gerät:
Reader
Ansatztage:

Toxoplasma gondii IgG, IgM

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<0,8 negativ; 0,8-1,1 grenzwertig; >1,1 positiv
Gerät:
Reader
Ansatztage:

Trichinella spiralis IgG

Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<9 negativ, 9-11 grenzwertig, >11 positiv
Gerät:
Reader
Ansatztage:

Darm Helminthen

Verfahren:
PCR
Untersuchungsmaterial:
Stuhlprobe
Untersuchungstechnik:
Multiplex PCR
Referenzbereich:
Gerät:
Reader
Ansatztage:

Darm Protozoen

Verfahren:
PCR
Untersuchungsmaterial:
Stuhlprobe
Untersuchungstechnik:
Multiplex PCR
Referenzbereich:
Gerät:
Reader
Ansatztage:

Darmpathogene Bakterien

Verfahren:
PCR
Untersuchungsmaterial:
Stuhlprobe
Untersuchungstechnik:
Multiplex PCR
Referenzbereich:
Gerät:
Reader
Indikation:
Ansatztage:

STI-Erreger Essential

Verfahren:
PCR
Untersuchungsmaterial:
Urinprobe
Untersuchungstechnik:
Multiplex-PCR
Referenzbereich:
Gerät:
Reader
Indikation:
Ansatztage:

STI-Erreger Genital ulcer

Verfahren:
PCR
Untersuchungsmaterial:
Urinprobe
Untersuchungstechnik:
Multiplex-PCR
Referenzbereich:
Gerät:
Reader
Indikation:
Ansatztage:

Analyte (Messgrößen), welche mit einem * markiert sind, wurden nicht akkreditiert.

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Informationen zur Präanalytik

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Wichtige Hinweise zur Präanalytik und Probenhandhabung

Auf die komplexe Phase der Präanalytik können wir nur insofern Einfluss nehmen, als dass wir Ihnen die geeigneten Entnahme- und Versandmaterialien zur Verfügung stellen und Ihnen Informationen liefern. Ein korrektes Probenhandling in der präanalytischen Phase (z.B. Blutabnahmetechnik, Transport) beeinflusst maßgeblich die Zuverlässigkeit von Laboranalysen und trägt dadurch in hohem Maße zur Qualitätssicherung bei. Präanalytische Fehler sind eine häufige Ursache für klinisch unplausible Befunde und können zu Fehlinterpretationen und inadäquater Behandlung führen. Durch eine korrekte Probenentnahme, richtige Wahl der Entnahmegefäße und schnellstmöglichen Probentransport sind die meisten Störungen vermeidbar. Alle durchgeführten Analysen werden gemäß den ­Richtlinien der Bundesärztekammer (RiLiBÄK) durchgeführt.

Da sich die meisten Teilschritte der Kontrolle durch das Labor entziehen, soll hier auf die wichtigsten Aspekte kurz eingegangen werden.

Die vorliegenden Informationen sollen dazu dienen, präanalytische Fehler minimal zu halten und so die Voraussetzung für zuverlässige Befunde zu schaffen. Informationen zur Präanalytik finden sie auf der Homepage unter „Formulare und Checklisten“. Weitere Auskünfte können telefonisch oder per Mail über unser Kontaktformular eingeholt werden.

Vor der Probenahme sollten die benötigten Probengefäße (Verfallsdatum beachten!) bereitgelegt und mit den erforderlichen Daten beschriftet werden. Um Fehler bei der Probenzuordnung zu vermeiden und um Verwechslungen auszuschließen, ist eine korrekte und leserliche Beschriftung beziehungsweise Barcodierung der Probengefäße mit dem Untersuchungsmaterial erforderlich, nicht der Schutzhülle oder der Versandtüte!

Blutbild- und EliSpot-/iSpot-Röhrchen müssen wegen des erforderlichen Mischungsverhältnisses immer bis zur Markierung gefüllt werden, da die enthaltene Lösung in einem bestimmten Volumen vorgelegt ist.