Leistungsverzeichnis
Messgenauigkeit
Messgenauigkeit steht bei uns an oberster Stelle. Durch kontinuierliche Maßnahmen und regelmäßige Kontrollen streben wir danach, methodenbedingte Abweichungen der Messwerte vom wahren Wert sowie Schwankungen so weit wie möglich zu minimieren.
Die Aktualität des Leistungsverzeichnisses entspricht dem Februar 2025.
Tickplex Basic - Borrelia IgG, IgM
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<0,89 negativ; 0,9-0,99 grenzwertig; >1,0 positiv
Gerät:
Reader
Indikation:
Tickplex Plus - Borrelia afzelii/burgdorferi/garinii, Babesia microti, Bartonella henselae, Ehrlichia chaffeensis, Rickettsia akari, Coxsackievirus Typ A16, Epstein-Barr-Virus, Human Prvovirus B19, Mycoplasma pneumoniae/fermentans
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
Tickplex Plus
Referenzbereich:
<0,89 negativ, 0,9-0,99 schwach, >1,0 positiv
Gerät:
Reader
Indikation:
–
Anaplasma IgG, IgM
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
IFT
Referenzbereich:
<1:64, <1:20
Gerät:
Fluoreszenzmikroskop
Indikation:
Babesia IgG, IgM
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
IFT
Referenzbereich:
<1:16, <1:20
Gerät:
Fluoreszenzmikroskop
Indikation:
Bartonella henselae IgG, IgM
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
IFT
Referenzbereich:
<1:64, <1:20
Gerät:
Fluoreszenzmikroskop
Indikation:
Bartonella quintana IgG, IgM
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
IFT
Referenzbereich:
<1:64, <1:20
Gerät:
Fluoreszenzmikroskop
Indikation:
Borrelia-IgG, IgM
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<16 negativ; 16-22 grenzwertig; >22 positiv
Gerät:
Reader
Indikation:
Borrelia-IgG, IgM
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
Line-Blot
Referenzbereich:
Negativ
Gerät:
Euroblotmaster, Eurolinescan
Indikation:
Borrelia-IgG, IgM
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
Microarray
Referenzbereich:
Negativ
Gerät:
Spotsight
Indikation:
Campylobacter jejuni-IgG/-IgA
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
Line-Blot
Referenzbereich:
negativ
Gerät:
Euroblotmaster, Eurolinescan
Indikation:
Chlamydia pneumoniae IgG, IgA
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
Negativ: <0,8; Grenzwertig: 0,8-1,1; Positiv: >1,1
Gerät:
Reader
Indikation:
Chlamydia trachomatis IgG, IgA
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
Negativ: <0,8; Grenzwertig: 0,8-1,1; Positiv: >1,1
Gerät:
Reader
Indikation:
Ehrlichia chaffeensis IgG, IgM
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
IFT
Referenzbereich:
<1:64, <1:20
Gerät:
Fluoreszenzmikroskop
Indikation:
Mycoplasma pneumoniae IgG, IgA
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<0,8 negativ; 0,8-1,1 grenzwertig;>1,1 positiv
Gerät:
Reader
Indikation:
Rickettsia typhi, rickettsi IgG, IgM
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
IFT
Referenzbereich:
<1:64
Gerät:
Fluoreszenzmikroskop
Indikation:
Yersinia enterocolitica IgG, IgA
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<0,8 negativ, 0,8-1,1 grenzwertig, >1,1 positiv
Gerät:
Reader
Indikation:
Aspergilus Peptid Mix 1,2 iSpot*
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Indikation:
Babesia microti iSpot*
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Indikation:
Bartonella henselae iSpot*
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Indikation:
Borrelia iSpot*
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Indikation:
Borrelia miyamotoi iSpot*
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Indikation:
Candida albicans iSpot*
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Indikation:
Chlamydia pneumoniae iSpot*
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Indikation:
Chlamydia trachomatis iSpot*
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Indikation:
Ehrlichia, Anaplasma iSpot*
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Indikation:
Mycoplasma pneumoniae iSpot*
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Indikation:
Rickettsia iSpot*
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Indikation:
T-Lymphocytes mit Aspergillus Peptid Mix 1, 2
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Indikation:
T-Lymphocytes mit Babesia microti
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Indikation:
T-Lymphocytes mit Bartonella henselae
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Indikation:
T-Lymphocytes mit Borrelia miyamotoi*
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Indikation:
T-Lymphocytes mit Borrelia*
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Indikation:
T-Lymphocytes mit Candida albicans
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Indikation:
T-Lymphocytes mit Chlamydia pneumoniae
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Indikation:
T-Lymphocytes mit Chlamydia trachomatis
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Indikation:
T-Lymphocytes mit Ehrlichia, Anaplasma
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Indikation:
T-Lymphocytes mit Mycoplasma pneumoniae
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Indikation:
T-Lymphocytes mit Rickettsia
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Indikation:
T-Lymphocytes mit Yersinia
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Indikation:
Yersinia iSpot*
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Indikation:
igG-Foodscreen Basic (90 Nahrungsmittel)*
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
negativ
Gerät:
Reader
Indikation:
–
IgG-Foodscreen Basic Plus (180 Nahrungsmittel)*
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
negativ
Gerät:
Reader
Indikation:
–
IgG-Foodscreen Complete (270 Nahrungsmittel)*
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
negativ
Gerät:
Reader
Indikation:
–
IgG-Foodscreen Screening (44 Nahrungsmittel)*
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
negativ
Gerät:
Reader
Indikation:
–
Toxiplex Basic (Aflatoxin B1, Deoxynivalenol, Fumonisin (B1 & B2), Ochratoxin A, und Zearalenone)*
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
negativ
Gerät:
Reader
Indikation:
–
Immune Status
Verfahren:
Durchflusszytometrie
Untersuchungsmaterial:
Heparin, EDTA
Untersuchungstechnik:
Durchflusszytometrie
Referenzbereich:
–
Gerät:
DxFLEX
Indikation:
–
Coxsackie-Virus A7, B1 IgA
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
IFT
Referenzbereich:
<1:10
Gerät:
Fluoreszenzmikroskop
Indikation:
Coxsackie-Virus A7, B1 IgG
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
IFT
Referenzbereich:
<1:100
Gerät:
Fluoreszenzmikroskop
Indikation:
Cytomegalo-Virus IgG, IgM
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<0,8 negativ, 0,8-1,1 grenzwertig, >1,1 positiv
Gerät:
Reader
Indikation:
Echoviren IgA, IgM
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
< 10 U/ml negativ, 10 – 15 U/ml grenzwertig, > 15 U/ml positiv
Gerät:
Reader
Indikation:
Echoviren IgG
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
< 11 U/ml negativ, 11 – 15 U/ml grenzwertig, > 15 U/ml positiv
Gerät:
Reader
Indikation:
Epstein-Barr-Virus CA IgG, IgM, EBNA
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
Mikroarray
Referenzbereich:
<15
Gerät:
AID Reader
Indikation:
Herpes simplex Virus 1, 2 IgM, IgG, IgA
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<0,8 negativ, 0,8-1,1 grenzwertig, >1,1 pos
Gerät:
Reader
Indikation:
Parvovirus B19 IgG, IgM
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
–
Gerät:
Reader
Indikation:
Varizella Zoster Virus IgG
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<80IE/l negativ, 80-110 grenzwertig, >110IE/l positiv
Gerät:
Reader
Indikation:
Varizella Zoster Virus IgM, IgA
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<0,8 negativ, 0,8-1,1 grenzwetig, >1,1 positiv
Gerät:
Reader
Indikation:
HHV 6 iSpot*
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Indikation:
HHV 7 iSpot*
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 schwach positiv, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Indikation:
HSV 1/2 iSpot*
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
–
Gerät:
AID Reader
Indikation:
SARS CoV-2 iSpot*
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<5 negativ, 5-6 grenzwertig, >6 positiv
Gerät:
AID Reader
Indikation:
–
T-Lymphocytes mit CMV (2 Antigens: lytic + latent)
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Indikation:
T-Lymphocytes mit EBV (2 Antigens: lytic + latent)
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Indikation:
T-Lymphocytes mit HSV 1/2
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Indikation:
T-Lymphoztyten mit HHV6
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Indikation:
T-Lymphoztyten mit HHV7
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Indikation:
T-Lymphoztyten mit VZV
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
Elispot
Referenzbereich:
<4
Gerät:
AID Reader
Indikation:
VZV iSpot
Verfahren:
Zellfunktionstests
Untersuchungsmaterial:
CPDA
Untersuchungstechnik:
iSpot
Referenzbereich:
<2 negativ, 2-3 grenzwertig, >3 positiv
Gerät:
AID Reader
Indikation:
Ascaris IgG
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
–
Gerät:
Reader
Indikation:
Echinococcus multilocularis, granulosus IgG
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<9 negativ, 9-11 grenzwertig, >11 positiv
Gerät:
Reader
Indikation:
Entamoeba histolytica IgG
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<9 negativ, 9-11 grenzwertig, >11 positiv
Gerät:
Reader
Indikation:
Leishmania infantum IgG
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<9 negativ, 9-11 grenzwertig, >11 positiv
Gerät:
Reader
Indikation:
Taenia solium IgG
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<9 negativ, 9-11 grenzwertig, >11 positiv
Gerät:
Reader
Indikation:
Toxocara canis IgG
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<9 negativ, 9-11 grenzwertig, >11 positiv
Gerät:
Reader
Indikation:
Toxoplasmosis IgM, IgG
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<0,8 negativ; 0,8-1,1 grenzwertig; >1,1 positiv
Gerät:
Reader
Indikation:
Trichinella spiralis IgG
Verfahren:
Ligandenassays
Untersuchungsmaterial:
Serum/Z-Gel
Untersuchungstechnik:
ELISA
Referenzbereich:
<9 negativ, 9-11 grenzwertig, >11 positiv
Gerät:
Reader
Indikation:
Darm Helminthen Multiplex-PCR
Verfahren:
PCR
Untersuchungsmaterial:
Stuhlprobe
Untersuchungstechnik:
Multiplex PCR
Referenzbereich:
–
Gerät:
Reader
Indikation:
Darm Protozoen Multiplex-PCR
Verfahren:
PCR
Untersuchungsmaterial:
Stuhlprobe
Untersuchungstechnik:
Multiplex PCR
Referenzbereich:
–
Gerät:
Reader
Indikation:
Darmpathogene Bakterien Multiplex-PCR
Verfahren:
PCR
Untersuchungsmaterial:
Stuhlprobe
Untersuchungstechnik:
Multiplex PCR
Referenzbereich:
–
Gerät:
Reader
Indikation:
–
STI-Erreger Essential Multiplex-PCR
Verfahren:
PCR
Untersuchungsmaterial:
Urinprobe
Untersuchungstechnik:
Multiplex-PCR
Referenzbereich:
–
Gerät:
Reader
Indikation:
–
STI-Erreger Genital ulcer Multiplex-PCR
Verfahren:
PCR
Untersuchungsmaterial:
Urinprobe
Untersuchungstechnik:
Multiplex-PCR
Referenzbereich:
–
Gerät:
Reader
Indikation:
–
Analyte (Messgrößen), welche mit einem * markiert sind, wurden nicht akkreditiert.
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Informationen zur Präanalytik
Wichtige Hinweise zur Präanalytik und Probenhandhabung
Auf die komplexe Phase der Präanalytik können wir nur insofern Einfluss nehmen, als dass wir Ihnen die geeigneten Entnahme- und Versandmaterialien zur Verfügung stellen und Ihnen Informationen liefern. Ein korrektes Probenhandling in der präanalytischen Phase (z.B. Blutabnahmetechnik, Transport) beeinflusst maßgeblich die Zuverlässigkeit von Laboranalysen und trägt dadurch in hohem Maße zur Qualitätssicherung bei. Präanalytische Fehler sind eine häufige Ursache für klinisch unplausible Befunde und können zu Fehlinterpretationen und inadäquater Behandlung führen. Durch eine korrekte Probenentnahme, richtige Wahl der Entnahmegefäße und schnellstmöglichen Probentransport sind die meisten Störungen vermeidbar. Alle durchgeführten Analysen werden gemäß den Richtlinien der Bundesärztekammer (RiLiBÄK) durchgeführt.
Da sich die meisten Teilschritte der Kontrolle durch das Labor entziehen, soll hier auf die wichtigsten Aspekte kurz eingegangen werden.
Die vorliegenden Informationen sollen dazu dienen, präanalytische Fehler minimal zu halten und so die Voraussetzung für zuverlässige Befunde zu schaffen. Informationen zur Präanalytik finden sie auf der Homepage unter „Formulare und Checklisten“. Weitere Auskünfte können telefonisch oder per Mail über unser Kontaktformular eingeholt werden.
Vor der Probenahme sollten die benötigten Probengefäße (Verfallsdatum beachten!) bereitgelegt und mit den erforderlichen Daten beschriftet werden. Um Fehler bei der Probenzuordnung zu vermeiden und um Verwechslungen auszuschließen, ist eine korrekte und leserliche Beschriftung beziehungsweise Barcodierung der Probengefäße mit dem Untersuchungsmaterial erforderlich, nicht der Schutzhülle oder der Versandtüte!
Blutbild- und EliSpot-/iSpot-Röhrchen müssen wegen des erforderlichen Mischungsverhältnisses immer bis zur Markierung gefüllt werden, da die enthaltene Lösung in einem bestimmten Volumen vorgelegt ist.
